mRNAの製造由来で発生するdsRNAの定量に!

dsRNA ELISAキット

mRNAワクチンやmRNA治療薬をはじめとするmRNA医薬品の原薬製造過程では、in vitro転写反応中に副生成物としてdsRNA (二本鎖RNA、double stranded RNA) が産生されます。
dsRNAは免疫原性を示すことから、mRNA医薬品の品質管理項目の1つとして重要視されており、USP (米国薬局方) には検査対象項目として掲載されています。
本製品はdsRNAを検出するためのELISAキットです。核酸の修飾や鎖長の影響を受けにくく、高感度に測定が可能です。

特長

dsRNA ELISAキット
  • 核酸修飾 (未修飾のUまたはm1ψ)、鎖長、マトリックスの影響を受けにくい​
  • 高感度検出が可能​
  • 抗体や発色試薬だけでなく、​標準品や緩衝液、洗浄液もキットに付属

性能

検量線範囲
UTP dsRNA
: 7.7 – 1,000 pg/mL
m1ψ dsRNA
: 15.4 – 2,000 pg/mL
測定対象 dsRNA (二本鎖RNA)
測定対象サンプル mRNA溶液
測定時間 約4.5時間
検出法 発色法 (主波長 450 nm / 副波長 620 nm)

検量線例

  • 標準曲線  (UTP dsRNA)
  • 標準曲線  (m1ψ dsRNA)

測定原理

本製品は、サンドイッチELISAでdsRNAの検出を行うキットです。
測定プレートの各ウェルには抗dsRNA抗体 clone:J2が固相化されており、このウェルに標準溶液またはサンプルを加えます。
その後、ビオチン標識抗dsRNA抗体 clone:J2とペルオキシダーゼ結合ストレプトアビジンを反応させます。

さらに、ウェルに残ったペルオキシダーゼをTMB溶液と反応させて、発色法による測定でdsRNAを測定することができます。

捕捉抗体 clone : J2
検出抗体 ビオチン化 clone:J2
測定原理

キット構成 ・ 測定プロトコル

キット構成

構 成 品 容 量
抗体固相化プレート 96 wells (8×12) /1枚
UTP dsRNA標準品 50 μL/本
m1ψ dsRNA標準品 50 μL/本
サンプル反応用緩衝液 25 mL/1本
抗体反応用緩衝液 25 mL/1本
ビオチン結合抗体 1本
ペルオキシダーゼ結合ストレプトアビジン溶液 120 μL/1本
TMB溶液 12 mL/1本
反応停止液 12 mL/1本
洗浄液 (10×) 100 mL/1本
プレートシール 4枚

測定プロトコル

Step 01
試薬の調製
キット構成部材の標準品、洗浄液を希釈調製します。
Step 02
サンプルの調製
任意のサンプルを希釈調製します。

UTP mRNAサンプルはmRNA 100 ng/mL以下、m1ψ mRNAサンプルはmRNA 500 ng/mL以下となるように濃度調整を行うことを推奨します。また、検量線範囲に収まるようにサンプル濃度を調整してください。
Step 03
反応操作
① 抗体固相化プレート 3回洗浄
② サンプルまたは標準溶液 100 μL添加
500 rpmで攪拌、20℃~25℃、2時間反応
*ビオチン結合抗体からビオチン結合抗体溶液の調製
(精製水120 μL で溶解後、室温化した抗体反応用緩衝液で100 倍に希釈してください。)
③ 抗体固相化プレート 3回洗浄
④ ビオチン結合抗体溶液 100 μL添加
500 rpmで攪拌、20℃~25℃、1時間反応
⑤ 抗体固相化プレート 3回洗浄
⑥ ペルオキシダーゼ結合
   ストレプトアビジン溶液
100 μL添加
500 rpmで攪拌、20℃~25℃、1時間反応
⑦ 抗体固相化プレート 3回洗浄
⑧ TMB溶液 100 μL添加
600 rpmで攪拌、10秒間 × 3回 攪拌後静置、20℃~25℃、30分反応
⑨ 反応停止液 100 μL添加
600 rpmで攪拌、10秒間 × 3回
Step 04
吸光度測定
プレートリーダーで主波長450 nm、副波長620 nmを測定します。

アプリケーションデータ

修飾核酸、鎖長の影響

固相 : K1 検出: K2

固相 : J2 検出: K2

固相 : J2 検出: J2

本製品の抗体組み合わせの検出系 (固相:J2、検出:ビオチン化J2) と、その他のdsRNAを認識する抗体クローンの組み合わせについて、それぞれUTP, m1ψ修飾のdsRNA標準品を使用し、さまざまな鎖長の濃度1 ng/mLのdsRNAを比較測定した。
その結果、本製品の検出系は、m1ψ修飾の有無や鎖長に関わらず、最も検出濃度の変動が少なく測定できた。

mRNA溶液中のdsRNAの測定

本製品を使用して、Cap構造を有する非修飾mRNAおよびm1ψ修飾mRNA溶液中にdsRNAを添加し、希釈後検出を行った。
その結果、非修飾mRNAの場合は、20 ng/mLから100 ng/mLの濃度範囲において、m1ψ修飾のmRNAの場合は、50 ng/mLから500 ng/mLの濃度範囲において、測定値がmRNAサンプル濃度に比例して、直線性を示すことを確認した。

添加回収試験

UTP mRNA

mRNA (ng/mL) dsRNA添加量 (pg/mL) dsRNA測定値 (pg/mL) 回収率 (%)
200 500 637 92
100 285 109
20 197 104
0 176 -
50 500 550 101
100 140 96.5
20 64 100
0 44 -

m1ψ mRNA

mRNA (ng/mL) dsRNA添加量 (pg/mL) dsRNA測定値 (pg/mL) 回収率 (%)
200 500 638 94.1
100 280 113
20 186 93
0 167 -
50 500 521 95.9
100 145 104
20 60 95.7
0 41.1 -

本製品を使用して、mRNA溶液中でdsRNAの添加回収試験を行った。
その結果、50 ng/mLおよび200 ng/mLにおいて、高い添加回収効率を示した。

IVT反応後のmRNA溶液中dsRNAの測定

他社製品 in vitro transcription (IVT) キットAおよびBを使用して、長鎖長と短鎖長の2種類のmRNAを合成した。
その後、本製品を使用してmRNA中に含まれるdsRNAの検出を行った。
その結果、非修飾mRNAの場合は、25 ng/mLから100 ng/mLの濃度範囲において、m1ψ修飾のmRNAの場合は、125 ng/mLから500 ng/mLの濃度範囲において、測定値がmRNAサンプル濃度に比例して、直線性を示すことを確認した。

マトリックスの影響

本製品と他社製品について、合成反応前のIVT溶液にdsRNAを添加した時の添加回収率を比較した。
本製品は他社製品よりもマトリックスの影響が無く、希釈無しでもdsRNAを測定できた。

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